血液/组织/细胞基因组 DNA 纯化/提取试剂盒使用超顺磁性微球可以特异性的吸附 DNA,通过洗涤去除 DNA 以外的蛋白质等杂质。洗脱液解离吸附在磁珠上的DNA,分离纯化得到高质量核酸。
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货号: HG-NA100
本试剂盒用于核酸的提取、富集、纯化等步骤,其处理后的产物可用于临床体外检测使用。
本试剂盒使用超顺磁性微球可以特异性的吸附 DNA,通过洗涤去除 DNA 以外的蛋白质等杂质。洗脱液解离吸附在磁珠上的DNA,分离纯化得到高质量核酸。
100 人份
序号 | 组分 | 规格 | |||
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1 | 磁珠悬液 ①,50 mg/mL | 1 × 2 mL | |||
2 | 裂解液 ② | 1 × 25 mL | |||
3 | 洗涤液 I ③ | 1 × 60 mL | |||
4 | 洗脱液 ④ | 1 × 30 mL | |||
5 | 蛋白酶 K ⑤ | 1 × 20 mg | |||
6 | 溶液 A ⑥ | 1 × 1 mL |
2-8℃下有效期为 24 个月。
本试剂盒适用于 BIO-DL32, TIANGEN TGuide S32, TIAN LONG NP968 -C 等自动化核酸提取仪,也适用于手动提取。
新鲜或冷冻的抗凝处理的人全血样品、组织及细胞。
首颈次使用前:&苍产蝉辫;
(1)在洗涤液 I ③中缓慢加入指i定量(见瓶身标签)的异丙醇(分析纯,需客户自备),并于“□"内打上“√",混匀后2~8℃保存。
(2)在蛋白酶 K 干粉 ⑤ 中加入指i定量(见管身标签)的溶液 A ⑥,并于“□"内打上“√",混匀后保存于 2~8℃,或分装后保存于 -20℃。
◆ 异丙醇(分析纯)
◆ 漩涡振荡器
◆ 80% 乙醇
◆ 垂直混合仪
◆ 1.5mL 离心管:2 个 / 样品
◆ 恒温金属浴 (Dry Bath Incubator, Cat.:2016C) 或水浴锅 (55℃ )
◆ 单通道移液器:20μL、200μL、1000μL
◆ 磁性分离器
取一个新的 1.5mL 离心管,加入 200μL 的抗凝血液样品、组织或细胞( 细胞取 1.0-1.5E6 cells 进行提取),具体可根据实验调整(不足 200μL 时可用 PBS 或洗脱液④补足),再分别加入 10μL 的蛋白酶 K ⑤(检查是否已加入溶液 A ⑥)和230μL 的裂解液②,以涡旋振荡器最大转速漩涡震荡 10s 后,置于 55℃条件下反应 5min。
加入 320μL 的异丙醇和 20μL 的磁珠悬液①,以涡旋振荡器最大转速漩涡震荡 10min(或漩涡震荡 10s 后置于垂直混合仪上反应 10min)。快速离心 3s 后,然后将离心管置于磁性分离器上放置 2min,用移液器移去上清液并取下离心管。注意:此步骤的磁性分离时间应不少于 2 min。
① 加入 600μL 洗涤液 I ③(检查是否已加入异丙醇),以涡旋振荡器最大转速漩涡震荡至少 1min,使磁珠充分重悬,快速离心 3s 后,再将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,移去上清液并取下离心管。重复该步骤一次。
② 加入 600μL80% 乙醇,以涡旋振荡器最大转速漩涡震荡至少 1min,使磁珠充分重悬,快速离心 3s 后,将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,移去上清液并取下离心管。重复该步骤一次。
注意:最后一步洗涤应尽量除尽洗涤液。
保持离心管于磁性分离器上,于室温下静置 10min 后,即磁珠表面无明显光泽,取下离心管。
注:干燥过程中若发现反应管中有液体残留时,可用小量程移液器吸弃液体。
加入 100~200μL 洗脱液④,涡旋震荡,或用移液器缓慢吹打磁珠,使磁珠充分重悬。然后于 55℃条件下加热 5min,快速离心 3s 后,将离心管置于磁性分离器上直至溶液澄清,转移上清液至新的 1.5mL 离心管中,此即为纯化得到的基因组DNA,可保存于 -20℃。
◆ 磁棒式自动化核酸提取仪(BIO-DL 32, TIANGEN TGuide S32, TIANLONG NP968 -C 等)
◆ 异丙醇(分析纯)
◆ 80% 乙醇
◆ 96 孔磁棒套 2 个
◆ 1.5 mL 离心管:2 个 / 样品
◆ 96 孔深孔板 1 个
◆ 单通道移液器:20μL、200μL、1000μL
(1)在 96 孔深孔板第 1 列和第 7 列依次加入 10μL 蛋白酶 K(检查 是否已经加入溶液 A),200μL 样本,230μL 裂解液和 320μL 异丙醇 。
(2)在第 2 列和第 8 列加入 600μL 洗涤液 I(检查是否已加入异丙醇)和 20μL 磁珠悬液。
(3)在第 3 列和第 9 列加入 600μL 洗涤液 I(检查是否已加入异丙醇)。
(4)在第 4 列和第 10 列加入 600μL80% 乙醇。
(5)在第 5 列和第 11 列加入 600μL80% 乙醇。
(6)在第 6 列和第 12 列加入 100~200μL 洗脱液。
注意:第 1 列和第 7 列试剂加入时按照以下顺序加入,先加入 10μL 蛋白酶 K,再加入 200μL 样本,然后加入 230μL 裂解液,最后加入 320μL 异丙醇。(若试剂加入顺序不对,可能导致核酸提取浓度及纯度偏低。)
(7)自动化核酸提取仪提取参数设置建议:
步骤 | 名称 | 槽位 | 等待时间(蝉别肠) | 混合时间(蝉别肠) | 磁吸时间(蝉别肠) | 吸磁模式 | 混合速度 | 体积 (μ尝) | 规格 (℃) |
1 | 吸磁珠 | 2 | 0 | 60 | 120 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
2 | 裂解 | 1 | 0 | 1200 | 180 | 循环 | 快 | 760 | 75 |
3 | 洗涤1 | 2 | 0 | 120 | 100 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
4 | 洗涤2 | 3 | 0 | 120 | 100 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
5 | 洗涤3 | 4 | 0 | 120 | 30 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
6 | 洗涤4 | 5 | 0 | 120 | 30 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
7 | 洗脱 | 6 | 350 | 300 | 100 | 循环 | 快 | 100 | 60 |
8 | 弃磁珠 | 2 | 0 | 60 | 0 | 循环 | 快 | 600 | OFF |
注意:以上程序参数可根据实际情况进行适当调整。其中关键步骤为裂解步骤的混合时间、温度,及洗涤步骤的混合时间,若提取效果不佳,可适当延长上述时间。
(8)自动化程序结束后,将第 6 及第 12 列的洗脱液分别转移至新的离心管中,此即为纯化得到的基因组 DNA,可保存于 -20℃。
1. 操作之前,请务必认真阅读本产物手册。
2. 血液样品的质量对产物 DNA 的纯化量有较大影响,应避免反复冻融血液样品。
3. 蛋白酶 K 干粉溶解后,可分装储存于 -20℃,但应避免反复冻融。
4. 应避免对磁珠进行冷冻、离心等操作。
5. 磁珠取用前应充分重悬均匀。
6. 磁珠干燥前,应使用移液器吸尽洗涤液。
7. 应避免磁珠过度干燥,否则会严重降低核酸洗脱效率。
8. 建议使用质量较好的离心管和移液器吸头,避免因粘附磁珠而造成损失。
9. 在 96 孔板中进行磁性分离操作时,磁珠吸附时间可适当延长。
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